一、细胞周期

细胞周期反映了细胞增殖速度。在这个过程中，细胞的DNA复制并加倍，在分裂结束时平均分配到两个子细胞中去。在细胞周期的不同时相，包括G1/G0期(2C DNA)、S期(介于2C~4C之间)和G2/M(4C DNA)，DNA含量存在差异，用DNA染料(PI是最经典的)进行染色，染料的荧光强度与DNA含量成正比，从荧光强度的变化，可以判断细胞所处的细胞周期时相。结合每个周期时相的细胞数目，可以判断各时相细胞所占百分比，从而判断细胞周期状况。

1.材料 

肿瘤细胞系、15ml 管、EP管、吸头、移液器和400目滤网试剂乙醇、胰酶、1XPBS、细胞周期试剂盒。

2.实验步骤

①制备单细胞悬液：

1）使用长满细胞的10厘米培养皿。

2）收集上清至15毫升离心管中。

3）用1XPBS洗涤一次，再次收集至15毫升离心管中。

4）加入1毫升胰酶，静置4分钟，在显微镜下观察细胞消化情况。当细胞形态变为圆形时，加入胰酶至15毫升离心管中。 

5）轻轻拍打皿底，帮助细胞从表面脱落，形成单细胞悬液。

6）加入1XPBS将细胞收集至15毫升离心管中。

7）以1500 rpm离心5分钟，弃去上清液。

②周期染色：

1）加入500μL 1XPBS液，使1x106细胞悬浮于15ml离心管中。

2）缓慢加入冰冷的无水乙醇至2ml，最终浓度达到75%，并在4°C保存过夜。

3）以1500 rpm离心5分钟，弃去上清液。

4）加入1ml 1XPBS，悬浮细胞，再次离心洗涤1遍。

5）弃去上清液，加入300μL  PI/RNase染色液，混匀后在避光条件下室温染色15分钟。使用400目筛网过滤单细胞悬液。

6）上机检测

7）Modifit软件模拟检测结果

二、细胞凋亡

在正常细胞中，磷脂酰丝氨酸(PS)只分布在细胞膜脂质双层的内侧，其外翻是细胞凋亡早期的一个关键信号，使得细胞表面发生分子组成的变化，从而被免疫系统识别和清除。AnnexinV是一种分子量为 35~36kD 的Ca2+依赖性磷脂结合蛋白，能够高亲和力地结合到PS上，其结合不依赖于细胞是否处于凋亡状态，因此它能够标记所有PS外翻的细胞，包括早期凋亡细胞。碘化丙啶(Propidium Iodide,PI)是一种荧光核酸染料，能够结合到DNA和RNA上。由于其分子较大，无法穿透活细胞的完整细胞膜，因此只能进入膜完整性受损的细胞，如凋亡中晚期和坏死细胞。

通过使用荧光标记的Annexin V（如Annexin V-FITC）与PI的联合染色，可以在流式细胞仪上同时检测PS的外翻和细胞膜的完整性，从而区分活细胞、早期凋亡细胞、中晚期凋亡细胞和坏死细胞。

1.材料 

肿瘤细胞系、FALCON 管、EP管、吸头、移液器和400目滤网，胰酶、1XPBS、凋亡试剂盒

2.实验步骤

①具体分组：

对照组（未经过任何处理的正常细胞，作为实验的基线数据）

实验组（根据实验设计，可能会有多个实验组，每个组都经过特定的处理，如药物处理、辐射、基因敲除等）

单染组（分别使用Annexin V和PI单独染色，用于流式细胞仪的补偿调节和确定染色的特异性）

未染色组（未进行任何染色的细胞，用于确定细胞的自发荧光水平）

②制备单细胞悬液：

与上述细胞周期收集单细胞悬液操作相同。

③凋亡检测的染色(FITC/PI双染试剂盒)：

1）将细胞悬浮于500μL 1X Binding Buffer中，均匀分装4到个离心管中（每管1 X 106细胞），包括未染色管、FITC单阳管、PI单阳管，FITC_PI双阳管。在管子上进行标记，并放置于冰盒中。

2）在FITC单阳管，FITC_PI双阳管中分别加入5μl Annexin V-FITC。

3）在PI单阳管，FITC_PI双阳管中分别加入5μl PI后轻轻混匀。

4）在室温避光条件下孵育15分钟。

5）将所有实验管中加入200μl 1X Binding Buffer。

6）使用400目筛网过滤单细胞悬液。

7）上机检测。