植物培养实验的操作程序通常包括准备阶段、接种阶段、培养阶段和驯化栽培阶段，以下是具体的操作程序以及每个阶段所需的实验仪器：

一、操作程序

1. 准备阶段

选择合适的培养基：根据实验需求和植物种类，选择合适的培养基配方，如MS、B5、White等，并添加适当的激素（如生长素、细胞分裂素等）。

配制和灭菌培养基：将培养基的各组分按照配方比例称量，溶解在蒸馏水中，调节pH值至适宜范围（一般为5.6~6.0），加入琼脂粉搅拌均匀后加热至完全溶解。然后分装至适当大小的培养皿或三角瓶中，密封后于高温高压灭菌锅内灭菌，通常为121℃下灭菌20分钟。

选择外植体：选择健康、无病虫害的植物作为供体，取生长旺盛的部位（如芽、嫩叶、根尖等）作为外植体。外植体应大小适中，避免过大导致培养基内激素浓度不均，过小则可能导致营养不足。

2. 接种阶段

外植体消毒：将外植体用流水冲洗干净，去除表面的泥土和杂质。然后用70%（或75%）酒精浸泡数十秒，再用无菌水冲洗3~5次。接着用0.1%升汞或1%次氯酸钠溶液浸泡10~15分钟（或数分钟），期间不断摇晃，然后用无菌水冲洗5~7次，确保冲洗干净消毒液。

接种：在无菌操作台上，用无菌工具（如手术刀、镊子、剪刀等）将消毒后的外植体接种到已准备好的培养基上。

3. 培养阶段

设置培养条件：将接种好的培养皿或三角瓶放入恒温培养箱内，设置适宜的温度（一般为25℃左右）和光照条件（光照强度、光照时间根据植物种类和生长阶段调整）。

定期观察与调整：定期观察培养物的生长情况，记录生长速度和形态变化。根据需要调整培养基的激素浓度和营养成分，以满足植物不同生长阶段的需求。

4. 驯化栽培阶段

继代培养：当培养物长至一定大小时，需要进行继代培养，即将原培养物切割成若干小块，分别接种到新的培养基上。继代培养的频率根据植物种类和生长速度而定。

生根培养：当培养物长出足够的根系时，可以将其转移到生根培养基上进行生根培养。生根培养基的激素浓度和营养成分应适当调整，以促进根系的生长和发育。

移栽：待根系生长健壮后，可以将植物移至温室或室外进行驯化，逐渐适应自然环境。移栽前应先浇透水，然后轻轻挖出植物，尽量保留根系上的土壤。移栽到合适的土壤中后，置于通风良好、阳光充足的地方养护。观察移栽后的植物生长情况，记录成活率和其他生长指标。

二、实验仪器

1. 无菌操作设备

无菌操作台（超净工作台）：提供无菌环境，防止微生物污染。

2. 培养设备

培养箱：提供稳定的温度、光照和湿度条件，是植物组培实验中的核心设备。

培养皿/三角瓶：承载植物组织培养物的容器，通常使用玻璃或塑料材质制成。

3. 消毒设备

高压蒸汽灭菌器：对培养基、器皿等进行高温高压蒸汽灭菌，以消除其中的微生物污染。

紫外线消毒灯：对实验室空间进行表面消毒，杀灭空气和物体表面的微生物。

4. 观察与记录设备

显微镜：用于观察细胞和组织结构，根据实验需要可选择光学显微镜或电子显微镜。

成像系统：与显微镜配合使用，用于记录和分析观察到的细胞和组织结构。

5. 其他工具与设备

解剖工具：包括手术刀、镊子、剪刀等，用于对植物组织进行切割和分离。

移液器：用于精确量取和转移液体。

电子天平：用于精确称量实验材料和试剂。

pH计：用于测量培养基和其他溶液的酸碱度。

数据记录与分析软件：用于记录和分析实验数据。

综上所述，植物培养实验的操作程序繁琐而精细，需要严格遵循无菌操作规范，并根据植物种类和实验需求选择合适的培养基、激素和培养条件。同时，实验仪器的选用也至关重要，需要确保仪器的准确性和可靠性，以满足实验的需求。